PROGRAMA DE GENÉTICA
CURSO 1995-96
PLAN NUEVO
INTRODUCCIÓN
Lección 1 Campos de estudio de la genética:
herencia y variabilidad. Genotipo y fenotipo.
NATURALEZA QUÍMICA Y REPLICACIÓN DEL MATERIAL
GENÉTICO
Lección 2 El DNA como material hereditario. Pruebas
directas: transformación y ciclo de los bacteriófagos.
Composición química y estructura del DNA. Desnaturalización
y renaturalización del DNA. Significado biológico.
Lección 3 Duplicación del DNA. Experimentos
que demuestran la hipotesis semicónservativa. Enzimas
que actuan en la replicación del DNA.
Lección 4 Modelos de replicación: q, s y
burbuja múltiple. Características físicas
de la replicación. Síntesis a nivel de la horquilla
de replicación.
CROMOSOMAS Y MEIOSIS
Lección 5 Organización y empaquetamiento
del DNA. El cromosoma eucariótico: composición
química de la cromatina. Estructura física de la
cromatina: el nucleosoma. Heterocromatina y eucromatina. Partes
del cromosoma eucariótico: estructura y función.
Cromosomas politénicos.
Lección 6 Meiosis: descripción general.
La profase I: sinapsis y complejo sinaptinémico, entrecruzamiento
y recombinación. Las otras fases de la meiosis. Diferencias
entre mitosis y meiosis.
GENÉTICA MENDELIANA
Lección 7 Unidades de la herencia. Experimentos
de Mendel: leyes de la segregación y de la transmisión
independiente. Dominancia y recesividad. Herencia intermedia.
Codominancia. Genes letales. Alelomorfismo multiple.
Lección 8 Polihibridismo: fórmulas generales.
La interacción génica: diferentes casos. Pleiotropia.
Penetración y expresividad.
HERENCIA LIGADA AL SEXO
Lección 9 Determinación cromosómica
del sexo. Heterocromosomas. Teoría cromosómica
de la herencia. Herencia ligada al sexo. Herencia ligada al
cromosoma Y. Herencia parcialmente ligada al sexo. Herencia
influida por el sexo. Compensación de la dosis en los
mamíferos.
GENÉTICA CUANTITATIVA
Lección 10 Caracteres de variabilidad contínua.
Consanguinidad y homocigosis. Experimentos de Johannsen. Experimentos
de Nilsson-Ehle. Hipotesis de East y desviaciones. Concepto de
heredabilidad. Distribución fenotípica y genotipos.
HERENCIA CITOPLASMÁTICA
Lección 11 Herencia de efecto materno. Herencia
materna: material genético de mitocondrias y cloroplastos.
RECOMBINACIÓN EN EUCARIOTAS
Lección 12 Descubrimiento del ligamiento. Recombinación
en eucariotas. Entrecruzamiento y recombinación.
Lección 13 Detección de los grupos de ligamento
en Drosophila . Elaboración de mapas de cromosomas.
Interferencia y coincidencia. Predicción a partir de los
mapas de cromosomas.
RECOMBINACIÓN EN PROCARIOTAS
Lección 14 Mecanismos de intercambio genético
en las bacterias. Conjugación. El plásmido F: cepas
F+ y Hfr. Elaboración de mapas por conjugación.
Sexducción.
Lección 15 Transducción generalizada y especializada.
Elaboración de mapas por transducción generalizada.
Transformación bacteriana.
NATURALEZA DEL GEN
Lección 16 Concepto de complementación. Análisis
de la región rII del fago T4: recombinación intragenica
y mapas por deleción.
INGENIERÍA GENÉTICA
Lección 17 Enzimas de restricción. Electroforesis
del DNA. Marcaje e hibridación. Clonación del DNA.
Tipos y características de los vectores de clonación.
Selección de clones.
CAMBIOS EN EL MATERIAL HEREDITARIO
Lección 18 Mutación génica. Mutación
espontanea e inducida. Tautomería de bases. Mutagénesis
por agentes físicos y químicos.
Lección 19 Reparación del DNA. Eliminación
directa de las lesiones. Reparación por escisión.
Reparación postreplicativa.
Lección 20 Secuencias de inserción y transposones
en los procariotas. Elementos transponibles en los eucariotas.
Lección 21 Mutación cromosómica:
cambios estructurales. Deleciones, duplicaciónes, translocaciones
e inversiones. Detección citológica y efecto genético.
Lección 22 Mutación cromosómica:
cambios numéricos. Aneuploidía: citología
y genética. Euploidía: autopoliploides y alopoliploides.
EXPRESIÓN GÉNICA
Lección 23 El mecanismo de la transcripción.
La transcripción en los procariotas. Colinearidad. Características
diferenciales de la transcripción en los eucariotas. La
maduración de los transcritos eucarióticos.
Lección 24 Esquema general de la traducción.
RNA ribosómico. RNA de transferencia. Características
generales del código genético.
Lección 25 Mecanismo de la traducción. La traducción en los procariotas. Características diferenciales de la traducción en los eucariotas.
REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GÉNICA EN
LOS PROCARIOTAS
Lección 26 Tipos de regulación: control
positivo / negativo; control inducible / reprimible. El operón
de la lactosa en E.coli. Analisis de la regulación
del operón lac mediante el estudio de mutantes. El operón
triptofano en E. coli. Control por atenuación en
los operones de vías biosintéticas.
REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GÉNICA Y
DESARROLLO EN LOS EUCARIOTAS
Lección 27 Niveles de control de la expresión
génica en los eucariotas. Regulación genética
del desarrollo y diferenciación celular.
BIBLIOGRAFÍA
LIBROS EN CASTELLANO
STRICKBERGER, M.W. 1988. Genética. 3a ed. Ed. Omega.
SUZUKI, D.T., GRIFFITHS, A.J.F., MILLER, J.H. & LEWONTIN,
R.C. 1992.Análisis Genético. 4a. ed..Ed. Interamericana-McGraw-Hill.
Madrid.
LIBROS EN INGLÉS
GARDNER, E.J.; SIMMONS, M.J. & SNUSTAD, D.P. Principles of
Genetics. 1991: 8a. ed. John Wiley & Sóns.
GRIFFITH , A. J. F. & McPHERSON, J. 1989 100+ Principles of
Genetics. W. H. Freeman & Co. New York
HARTL, D. L.; 1991 Basic Genetics 2nd ed. Jones & Bartlett
Publishers
RUSSELL, P. J.; 1992 Genetics 3rd ed. Harper Collins Publishers
LIBROS DE PROBLEMAS
BLANCO, J et al. 1982 Problemas de Genética. Akal Editor
LACADENA, J.R., et al. 1988 Problemas de Genética para
un curso general. Ed. Alhambra
STANFIELD, W.D. 1991 Genetics 3rd ed. Mac Graw-Hill Inc.
PRÁCTICAS
1 Cromosomas politénicos: a) técnica de preparación;
b) observación al microscopio óptico.
2 Observación de las fases de la meiosis en inflorescencias
masculinas de maiz o en espermatogonias de saltamontes.
3 Observación de Drosophila: diferenciación
de sexos, características morfológicas de los individuos
salvajes y observación de mutantes.
4 Estudio genético del caracter "sin ojos" de
Drosophila melanogaster.
5 Detección de DNA homólogos por hibridación
sobre membrana, utilizando una sonda no radioactiva.
METODOLOGÍA DOCENTE
La metodología que se aplicará al impartir el programa
de teoría tendrá como soporte las transparencias
y/o diapositivas, así como en algunos temas se utilitzarán
videos. Antes de impartir algunos temas se repartirán fotocopias
de los esquemas y transparencias utilizadas.
Las prácticas se realizarán de manera intesiva y
en grupos. Los alumnos dispondran de un guión de prácticas
detallado. En el inicio de cada una de las prácticas el
profesor expondra los objectivos que se pretenden con la práctica,
relacionándolos con los conceptos impartidos en el programa
de teoría y explicará en detalle los protocolos
a utilizar. Al acabar cada una de les prácticas se discutirán,
si es necesario, los resultados obtenidos por los diferentes grupos.
EVALUACIÓN
La evaluación constara de la asistencia a prácticas, de un examen de prácticas y de un examen de teoría diferenciados.
Las prácticas de genética constan de sesiones semanales de 2 horas, excepto una práctica que hay que realizar de forma intensiva (3 horas/dia durante dos dias consecutivos). La asistencia a las prácticas es obligatoria. La calificación de prácticas dependerá de la nota obtenida en el examen que se realizará al finalizarlas. Este examen se ha de realizar en convocatorias de febrero o junio del mismo curso en el que se han hecho las prácticas, en caso contrario, será necesario repetirlas.
La nota de prácticas puede disminuir 0.5, dejar igual o aumentar 0.5 puntos la nota obtenida en teoría. Un -0.5 del examen de practicas obtenido en la convocatoria de febrero puede recuperarse en la convocatoria de junio.
La nota de prácticas se guarda durante 4 años.
El examen de teoría sera común para todos los grupos
y consta de 20 preguntas tipo test (5 puntos como máximo),
dos preguntas (2 puntos como máximo) y dos problemas (3
puntos como máximo). El aprobado se obtiene con una calificación
mínima de 5 puntos.